- •Методические указания
- •Методические указания
- •Введение
- •Порядок работы
- •1.1.2. Явление адсорбции
- •Порядок работы
- •1.1.3. Явление коагуляции
- •Порядок работы
- •Физиология растительной клетки
- •1.2.1. Проницаемость живой материи и мертвой цитоплазмы.
- •Порядок работы
- •1.2.2. Явление плазмолиза и деплазмолиза
- •Порядок работы
- •1.2.3. Определение осмотического давления клеточного сока плазмолитическим методом
- •Порядок работы
- •1.2.4. Определение величины сосущей силы клеток упрощенным методом (по Уршпрунгу)
- •Порядок работы
- •2. Водный режим растений
- •2.1. Водообмен побега
- •Порядок работы
- •2.2. Водопроводимость древесины
- •Порядок работы
- •2.3. Изучение состояния устьиц при различных внешних условиях методом инфильтрации
- •Порядок работы
- •2.4 Определение интенсивности транспирации методом быстрого взвешивания
- •3. Усвоение растениями углерода
- •3.1. Изучение физико-химических и оптических свойств пигментов
- •3.1.1. Разделение пигментов(по методу Крауса)
- •Порядок работы
- •3.1.2. Отщепление магния и его замещение в хлорофилле
- •Порядок работы
- •3.1.3. Изучение оптических свойств пигментов
- •Порядок работы
- •3.1.4. Влияние на хлорофилл света и кислорода
- •Порядок работы
- •3.2. Изучение фотосинтеза (образование крахмала на свету)
- •Порядок работы
- •3.3 Определение интенсивности фотосинтеза методом половинок
- •4. Дыхание растений
- •4.1. Определение интенсивности дыхания разных частей растений
- •Порядок работы
- •4.2. Определение дыхательного коэффициента
- •Порядок работы
- •5. Минеральное питание растений
- •5.1. Определение содержания золы в разных частях растений
- •Порядок работы
- •5.2. Микрохимический анализ золы
- •Порядок работы
- •5.3. Знакомство с расчетом и методикой закладки вегетационных опытов
- •Порядок работы
- •5.4. Определение степени микоризности древесных растений с эктомикоризами
- •Порядок работы
- •6. Роль микроорганизмов в питании растений
- •6.1 Изучение жизни микробов под микроскопом
- •Порядок работы
- •6.2 Влияние внешних условий на жизнедеятельность микробов
- •Порядок работы
- •6.3. Изучение аммонификации белковых веществ
- •Порядок работы
- •6.4. Изучение нитрификации
- •Порядок работы
- •7.Превращение веществ
- •7.1. Анализ запасных веществ
- •Порядок работы
- •Определение вторичных метаболитов
- •Порядок работы
- •7. 3. Обнаружение фермента амилазы в прорастающих семенах
- •Порядок работы
- •7.4. Влияние температуры на скорость ферментных реакций
- •Порядок работы
- •8. Рост растений
- •Изучение периодичности роста
- •8.1.1.Изучение роста побега
- •Порядок работы
- •8.1.2. Изучение периодичности роста растений по толщине
- •Порядок работы
- •9. Устойчивость растений
- •Превращение запасных веществ в побегах растений в зимний период
- •Порядок работы
- •Определение жаростойкости растений (по ф.Ф. Мацкову)
- •Порядок работы.
- •Список рекомендуемой литературы
- •241037, Г. Брянск, пр. Ст. Димитрова, 3,
3.1.2. Отщепление магния и его замещение в хлорофилле
Расположенный в центральной части молекулы хлорофилла магний слабо удерживается, и при действии сильных кислот замещается двумя протонами (водородами). При этом, образуется феофитин, имеющий бурую окраску.
Если подействовать на феофитин солями меди или цинка, окраска зеленая восстанавливается.
Итак, цвет зависит от металло-органической связи в молекуле хлорофилла.
Материалы и оборудование: 1. Спиртовая вытяжка пигментов. 2. 10% соляная кислота. 3. Пробирки. 4. Спиртовка или электроплитка. 5. Держатели пробирок. 6. Уксуснокислая медь или уксуснокислый цинк.
Порядок работы
1. Налить в три пробирки по 2-3 мл вытяжки пигментов.
2. Одну пробирку оставить для контроля.
3. Во вторую и третью пробирки добавить по две капли соляной кислоты.
4. В третью пробирку добавить несколько крупинок уксуснокислого цинка и нагреть до кипения (если при этом окраска не изменится, добавить еще уксуснокислого цинка, и продолжать нагревать).
5. Записать результаты. Дать объяснение. Написать уравнение реакций.
3.1.3. Изучение оптических свойств пигментов
Флуоресценция хлорофилла
Флуоресценция – излучение световой энергии при переходе фотовозбужденной молекулы пигмента в основное невозбужденное состояние. Излучаемый свет имеет большую длину, чем поглощаемый. Это один из возможных путей «разрядки» энергии электронного возбуждения молекулы пигмента. Для пигментов типа порфиринов (хлорофилла) характерна флуоресценция красной части спектра.
В процессе фотосинтеза используются лишь те лучи, которые поглощаются пигментами.
Материалы и оборудование: 1. Пробирки с разными растворами пигментов, полученные при разделении пигментов по Краусу. 2. Бензиновая вытяжка из корнеплода моркови. 3. Спиртовая вытяжка пигментов (насыщеннный раствор). 4. Этиловый спирт для разбавления вытяжки. 5. Пробирки со штативом. 6. Пипетки на 1мл с делениями. 7. Темный экран. 8. Источник света. 9. Спектроскоп.
Порядок работы
1. Рассмотреть спиртовую вытяжку пигментов в проходящем свете, поместив пробирку перед источником света.
2. Рассмотреть спиртовую вытяжку в отраженном свете, поместив пробирку за источником света, а позади ее черный экран.
3. Записать, какую окраску имеет хлорофилл в проходящем и отраженном свете. Ознакомится с явлением флуоресценции (способность отражать лучи с измененной длиной волны).
4. Провести спектральные исследования насыщенной и разбавленной вытяжек пигментов и отдельно каротинов и ксантофиллов. Для этого воспользоваться пробирками с разделенными пигментами от предыдущей работы.
Для изучения взять 5 пробирок. Разбавить спиртовую вытяжку спиртом в отношениях 1:1, 1:3, 1:5, 1:15 : в первую пробирку налить 2 мл насыщенной спиртовой вытяжки;
во второй – 1 мл вытяжки и 1 мл спирта;
в третью – 0,5 мл вытяжки и 1,5 мл спирта;
в четвертую – 0,3 мл вытяжки и 1,5 мл спирта;
в пятую – 0,1 мл вытяжки и 1,5 мл спирта.
5. Поставить их поочередно перед спектроскопом и рассмотреть спектр поглощения растворов разной концентрации.
6. Рассмотреть для сравнения спиртовую вытяжку ксантофилла, полученную при разделении пигментов по Краусу, и бензиновую вытяжку каротина из корнеплода моркови.
Зарисовать спектры (видимые участки в таблице закрасить цветными карандашами, а поглощенные – черным).
Таблица 10 - Спектры поглощения пигментов
Растворы |
Цвет |
||||||
фиолетовый |
синий |
голубой |
зеленый |
желтый |
оранжевый |
красный |
|
Хлорофилла: |
|
|
|
|
|
|
|
неразведенный |
|
|
|
|
|
|
|
конц. 1:1 |
|
|
|
|
|
|
|
1:3 |
|
|
|
|
|
|
|
1:5 |
|
|
|
|
|
|
|
1:15 |
|
|
|
|
|
|
|
Каротина |
|
|
|
|
|
|
|
Ксантофилла |
|
|
|
|
|
|
|
Ответить на следующие вопросы:
а) Какие Вы знаете пигменты фотосинтезирующих систем?
б) Какую роль выполняют хлорофиллы и каротиноиды?
в) Из каких химических элементов состоит хлорофилл?