- •Биохимия лабораторный практикум
- •Часть 1
- •Протокол №___
- •Биохимия лабораторный практикум
- •Пояснительная записка
- •Оформление лабораторного журнала
- •Лабораторная посуда и оборудование для биохимических исследований
- •Мытье лабораторной посуды
- •Лабораторное Оборудование
- •Подготовка воды для клинико-биохимических исследований
- •Общие правила работы с наборами для клинико-биохимических исследований
- •Калибровка мерной посуды
- •Применение международной системы единиц (си) в биохимической лабораторной практике
- •Методы расчета экспериментальных данных
- •Приготовление и исследование образцов
- •Экстр акция бав из растительных тканей
- •Приготовление гомогената из растительных тканей
- •Получение плазмы и сыворотки крови
- •Приготовление гомогената из тканей животных
- •Методики подготовки фав исследуемых образцов
- •Раздел 1 работа № 1. Цветные реакции на белки и аминокислоты
- •1.1. Биуретовая реакция (реакция Пиотровского)
- •Оборудование и посуда: штатив с пробирками, капельницы или пипетки. Порядок выполнения работы
- •1.2. Реакция Миллона
- •Порядок выполнения работы
- •1.3. Ксантопротеиновая реакция (Мульдера)
- •Порядок выполнения работы
- •1.4. Реакция Адамкевича
- •Порядок выполнения работы
- •1.5. Реакция Шульце-Распайля
- •Порядок выполнения работы
- •1.6. Реакция Фоля
- •Порядок выполнения работы
- •1.7. Нингидриновая реакция (реакция Руэманна)
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •1.8. Реакция с формальдегидом
- •Порядок выполнения работы
- •Работа №2. Реакции осаждения белков
- •2.1. Реакции осаждения белков при нагревании
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •2.2. Осаждение белков солями тяжёлых металлов
- •Реактивы и материалы: раствор яичного белка или разбавленная сыворотка крови, сернокислая медь, 5% раствор, уксуснокислый свинец, 5% раствор, азотнокислое серебро, 3% раствор.
- •Порядок выполнения работы
- •2.3. Осаждение белков алкалоидными реактивами
- •Порядок выполнения работы
- •2.4. Осаждение белков концентрированными минеральными кислотами
- •Порядок выполнения работы
- •2.5. Осаждение белков органическими кислотами
- •Порядок выполнения работы
- •2.6. Осаждение белков органическими растворителями
- •Порядок выполнения работы
- •2.7. Осаждение белков фенолом
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •2.8. Отделение альбуминов от глобулинов в сыворотке крови методом высаливания сернокислым аммонием и хлористым натрием
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •Работа №3. Макромолекулярная природа белка
- •Сопоставление молекулярного веса гемоглобина и рибофлавина
- •Порядок выполнения работы
- •3.2. Диализ белка
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •3.3. Хроматография аминокислот на бумаге
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •Работа № 4. Сложные белки
- •4.1. Нуклеопротеины
- •4.1.1. Кислотный гидролиз нуклеопротеинов дрожжей и определение их состава
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •4.1.2. Изучение химического состава рибонуклеопротеинов дрожжей
- •Порядок выполнения работы
- •4.2. Хромопротеины
- •4.2.1. Открытие железа в гемоглобине
- •Порядок выполнения работы
- •4.2.2. Получение кристаллов гемина (Тейхмана)
- •Порядок выполнения работы
- •4.3. Фосфопротеины
- •4.3.1. Гидролиз казеина и открытие в гидролизате белкового компонента и фосфорной кислоты
- •Порядок выполнения работы
- •4.4. Гликопротеины
- •4.4.1. Выделение муцина и реакции на его белковую часть и углеводную группировку
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •4.4.2. Реакция с азотной кислотой
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 5. Свойства ферментов
- •5.1. Гидролиз крахмала α-амилазой слюны
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •5.2. Термолабильность α-амилазы слюны
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •5.3. Специфичность α-амилазы слюны и сахарозы дрожжей
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •5.4. Влияние рН на активность α-амилазы слюны (определение оптимума рН для действия амилазы)
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •5.5. Влияние активаторов и ингибиторов на активность α-амилазы слюны
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •Порядок выполнения работы
- •5.6.3. Установление термолабильности уреазы
- •Порядок выполнения работы
- •5.7. Исследование ферментативной активности липазы
- •5.7.1. Исследование действия липазы на липиды животного происхождения
- •Порядок выполнения работы
- •5.7.2. Исследование действия липазы на липиды растительного происхождения
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 6. Определение ферментативной активности
- •6.1. Определение активности -амилазы по Вольгемуту
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •6.2. Определение активности каталазы крови по Баху и Зубковой
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола.
- •Работа № 7. Витамины. Качественный анализ витаминов
- •7.1. Витамин в1 (тиамин, анейрин)
- •Реакция окисления витамина в1 в тиохром (2,7-диметилтиохромин-8-этанол)
- •Порядок выполнения работы
- •7.2. Витамин в2 (рибофлавин)
- •Реакция восстановления витамина в2
- •Порядок выполнения работы
- •7.3. Витамин Вб (пиридоксин, адермин)
- •Реакция витамина Вб с хлорным железом
- •Порядок выполнения работы
- •7.4.Витамин в12 (цианкобаламин, антианемический)
- •Открытие кобальта, содержащегося в витамине в12, реакцией с тиомочевиной
- •Порядок выполнения работы
- •7.5. Витамин рр (никотинамид, антипеллагрический)
- •7.5.1. Качественная реакция на никотиновую кислоту с уксуснокислой медью
- •7.6.1. Реакция на витамин с железосинеродистым калием
- •Порядок выполнения работы
- •7.6.2. Качественная реакция на витамин с с метиленовой синью
- •Порядок выполнения работы
- •7.6.3. Качественная реакция на витамин с с 2,6-дихлорфенолиндофенолом
- •Порядок выполнения работы
- •7.7. Витамин а (ретинол)
- •7.7.1. Открытие витамина а в рыбьем жире с концентрированной серной кислотой
- •Порядок выполнения работы
- •7.7.2. Открытие каротина в шиповнике и обнаружение в нем ненасыщенных связей
- •Порядок выполнения работы
- •7.8. Витамин d (кальциферол, антирахитический)
- •Обнаружение витамина d в рыбьем жире с анилиновым реактивом
- •Порядок выполнения работы
- •7.9. Витамин е (токоферолы, витамин размножения)
- •Качественная реакция на витамин е с концентрированной азотной кислотой
- •Порядок выполнения работы
- •7.10. Витамин к (филлохинон, антигеморрагический)
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •Работа № 8. Количественный анализ витаминов
- •8.1. Определение витамина с йодометрическим методом
- •Порядок выполнения работы
- •8.2. Количественное определение витамина р (рутина) в чае
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 9. Углеводы
- •9.1. Хроматографический анализ углеводов
- •Порядок выполнения работы
- •9.2. Реакции на открытие углеводов. Свойства углеводов
- •9.2.1. Реакция «серебряного зеркала»
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.2. Реакция Селиванова (открытие фруктозы)
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.3. Проба Бенедикта на глюкозу
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.4. Реакция Молиша
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.5. Цветная реакция с ванилином на фруктозу
- •9.2.8. Проба Гайнеса
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.11. Реакция с тимолом
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.12. Восстанавливающая способность лактозы
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.13. Отсутствия восстанавливающей способности сахарозы
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.14. Растворение целлюлозы в медноаммиачном растворе
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.15. Взаимодействие полисахаридов с йодом
- •Порядок выполнения работы
- •9.2.16. Действие на углеводы реактива Фелинга
- •Порядок выполнения работы
- •9.3. Йодометрический метод определения лактозы
- •Порядок выполнения работы
- •Расчёт результатов
- •Работа № 10. Выделение и анализ гликогена
- •10.1. Выделение гликогена из дрожжей
- •Порядок выполнения работы
- •Расчёт результатов
- •11.1. Липиды и их обмен
- •11.1.1. Открытие непредельных жирных кислот
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •11.1.2. Эмульгирование жиров
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •11.1.3. Влияние желчных кислот на активность панкреатической липазы
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •11.1.4. Роль сывороточного альбумина в транспорте высших ук ирных кислот в крови
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •11.2. Фосфолипиды
- •11.2.1. Определение общих фосфолипидов в сыворотке крови по фосфору
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •11.2.2. Обнаружение фосфатидилхолина в желтке куриного яйца
- •Порядок выполнения работы
- •11.3. Стерины (стеролы) и стериды
- •11.3.1. Открытие холестерина в тканях головного мозга
- •Порядок выполнения работы
- •11.3.2. Количественное определение общего холестерина в сыворотке крови прямым методом по реакции Златкис– Зака
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендации к составлению протокола
- •Работа № 12. Показатели липидов. Химические свойства липидов
- •12.1. Показатели липидов
- •12.1.1. Количественная оценка степени ненасыщенности липидов по йодному числу
- •Порядок выполнения работы
- •12.1.2. Обнаружение перекисных соединений
- •Порядок выполнения работы
- •12.1.3. Количественное определение перекисного числа
- •Порядок выполнения работы
- •12.1.4. Определение кислотного числа
- •Порядок выполнения работы
- •12.2.2. Получение калиевого жидкого мыла
- •Порядок выполнения работы
- •12.2.3. Определение содержания жирных кислот в твердом мыле
- •Порядок выполнения работы
- •Порядок выполнения работы
- •12.2.7. Обнаружение стеролов в растительном масле
- •Порядок выполнения работы
- •Раздел 2 работа № 13. Исследование ферментов дыхательной цепи
- •13.1. Исследование действия каталазы крови
- •Порядок выполнения работы
- •13.2. Качественное определение активности сукцинатдегидрогеназы мышц
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 14. Окислительное фосфорилирование
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 15. Моделирование биологических окислительно-восстановительных систем
- •15.1. Сопоставление редокс-потенциалов рибофлавина и метиленового синего
- •Порядок выполнения работы
- •15.2. Обнаружение дегидрогеназ лимоннокислого цикла
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 16. Переваривание углеводов в желудочно-кишечном тракте
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 17. Метаболизм липидов
- •17.1. Открытие непредельных жирных кислот в жире
- •Порядок выполнения работы
- •17.2. Эмульгирование липидов
- •Порядок выполнения работы
- •17.3. Качественные реакции на желчные кислоты
- •Порядок выполнения работы
- •17.4. Роль сывороточного альбумина в транспорте высших жирных кислот в крови
- •Порядок выполнения работы
- •17.5. Определение общих фосфолипидов в сыворотке крови по фосфору
- •Порядок выполнения работы
- •17.6. Открытие холестерина в тканях головного мозга
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 18. Переваривание жиров липазой поджелудочного сока
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 19. Обмен белков
- •19.1. Переваривание белков пепсином
- •Порядок выполнения работы
- •19.2. Переваривание белков ферментами поджелудочной железы
- •Порядок выполнения работы
- •Работа №20. Анализ желудочного сока
- •20.1. Титрование кислот желудочного содержимого
- •Порядок выполнения работы
- •Пример расчета
- •20.2. Колориметрический метод определения протеолитической активности поджелудочного сока
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 21. Исследование гормонов различных классов
- •21.1. Гормон поджелудочной железы — инсулин
- •Порядок выполнения работы
- •21.2. Гормоны щитовидной железы
- •Порядок выполнения работы
- •21.3. Гормон мозгового слоя надпочечников – адреналин
- •Порядок выполнения работы
- •21.4. Гормоны коркового слоя надпочечников (кортикостероиды)
- •Порядок выполнения работы
- •21.5. Гормоны половых желез
- •Образование фенолята фолликулина
- •Реакция на фенольную группу
- •Работа № 22. Минеральный обмен
- •22.1. Определение фосфатов
- •22.1.1. Определение неорганического фосфора в сыворотке крови по восстановлению фосфорно-молибденовой кислоты
- •Порядок выполнения работы
- •22.1.2. Определение фосфатов в слюне
- •Порядок выполнения работы
- •22.2. Определение кальций
- •Порядок выполнения работы
- •22.3. Обнаружение роданидов в слюне
- •Порядок выполнения работы
- •22.4. Определение кальция и фосфора в ткани зуба
- •Порядок выполнения работы
- •22.5. Исследование минерального состава кости
- •22.5.1. Реакция на кальций
- •Порядок выполнения работы
- •22.5.2. Реакция на магний
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 23. Биохимия мышечного сокращения
- •23.1. Разделение белков мышечной ткани
- •Порядок выполнения работы
- •23.2. Ферменты мышечной ткани
- •Порядок выполнения работы
- •23.3. Экстрактивные вещества мышечной ткани
- •Порядок выполнения работы
- •23.4. Минеральные вещества мышечной ткани
- •Порядок выполнения работы
- •23.5. Получение и исследование свойств желатины из сухожилий
- •Порядок выполнения работы
- •23.6. Обнаружение молочной кислоты
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 24. Биохимия печеночной ткани
- •Тимоловая проба (нтк «Анализ-х») (уирс)
- •Порядок выполнения работы
- •Раздел 3 работа № 25. Рн и буферные системы
- •25.1. Лимонно-фосфатная буферная смесь. Приготовление растворов
- •Порядок выполнения работы
- •25.2. Определение рН исследуемого раствора универсальным индикатором
- •Порядок выполнения работы
- •25.3. Свойства буферных растворов
- •Порядок выполнения работы
- •25.4. Приготовление буферного раствора и определение его буферной емкости
- •25.4.1. Приготовление ацетатного буфера
- •Порядок выполнения работы
- •25.4.2. Определение буферной емкости раствора по щелочи
- •Порядок выполнения работы
- •Работа №26. Определение общего азота методом кьельдаля
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 27. Рефрактометрическое определение концентрации белков в сыворотке крови
- •Порядок выполнения работы
- •Работа №28. Определение общего фосфора в тканях
- •Порядок выполнения работы
- •Работа №29. Определение содержания гликогена
- •29.1. Определение содержания гликогена в мышечной ткани Порядок выполнения работы
- •29.2. Определение содержания гликогена в печени
- •Работа № 30. Количественное определение нуклеиновых кислот
- •30.1. Определение суммарного количества нуклеиновых кислот
- •Порядок выполнения работы
- •30.2. Определение нуклеиновых кислот в крови (по п. В. Симакову)
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 31. Газохроматографическое определение спирта в крови
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 32. Газохроматографическое определение лекарственных препаратов
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 33. Прямое атомно-абсорбционное определение 3d-элemehtob (Fe, Сu, Mn, Co, Ni) и Zn в биологическом материале
- •Порядок выполнения работы
- •Работа № 34. Определение веществ методом тсх
- •34.1. Определение углеводов в крови методом тсх
- •34.1.1. Открытие сахароз по Барону и Экономидису в моче
- •Порядок выполнения работы
- •34.1.2. Количественное определение сахароз по Банхеру
- •Порядок выполнения работы
- •34.2. Определение холестерина в крови методом тсх
- •Порядок выполнения работы
- •Рекомендуемая литература основная
- •Дополнительная литература
- •Содержание
- •Раздел 1 18
- •Раздел 2 100
- •Раздел 3 135
Работа №29. Определение содержания гликогена
Метод основан на выделении гликогена из мышечной ткани и цветной реакции с антроном. Метод состоит из следующих основных операций: гидролиз белков мышечной ткани щелочью, выделение гликогена из раствора этиловым спиртом, промывание гликогена и его растворение, реакция с антроном и развитие окраски, измерение интенсивности окраски. При нагревании навески мышечной ткани с крепким раствором щелочи происходит гидролиз мышечных белков, при этом гликоген освобождается из клеток. Гликоген не растворяется в спирте, поэтому он выпадает в осадок при добавлении довольно большого количества спирта. Прибавление сюда же нескольких капель концентрированной серной кислоты способствует осаждению гликогена вследствие образования сульфата аммония.
Окрашенный от зеленого до сине-зеленого цвета продукт реакции имеет максимум поглощения при длине волны 620 ммк. Интенсивность окраски раствора измеряют на спектрофотометре СФ-4 или фотоэлектроколориметре ФЗК-М или фотометре ФТ-2 с красным светофильтром с максимум пропускания при той же длине волны.
Реактивы и материалы: 50%-ный раствор едкого кали, 96-, 60- и 80%-ный этиловый спирт, эфир, концентрированная химически чистая серная кислота, антрон (производное антрахинона), гликоген или глюкоза (для построения калибровочного графика), 95%-вая серная кислота (к 50 мл воды прибавляют 1 л концентрированной H2SO4 и охлаждают), свежеприготовленный 0,2%-ный раствор антрона в 96%-ной серной кислоте. 0,2 г антрона помещают в мерную колбу на 100 мл, растворяют и доводят до метки 95%-ной серной кислотой, после выдержки в течение 1 ч раствор готов для использования (на 1 день работы), 30%-ный водный раствор едкого кали, свежеприготовленный 0,2%-ный раствор антрона в 95% -ной серной кислоте (0,2 г антрона в 100 мл 95%-ной серной кислоты).
Оборудование и посуда: центрифугира, центрифужные пробирки, технические весы, пробирки, штатив, водяная баня, сифон, пипеткой, стеклянная палочка, спектрофотометр.
29.1. Определение содержания гликогена в мышечной ткани Порядок выполнения работы
В центрифужные пробирки размером 25 x 160 мм вносят 5 мл 50%-ного раствора едкого кали и около 2,5 г мяса, взвешенного на технических весах с точностью до 0,01 г. Пробирки помещают в специальный штатив, вместе с которым их ставят в кипящую водяную баню. После образования однородного раствора (все частички мяса растворились) пробирки охлаждают, добавляют 5 мл дистиллированной воды, осаждают гликоген 40 мл 96%-ного спирта и вносят несколько капель концентрированной серной кислоты.
Пробирки оставляют на 24 ч, после чего центрифугируют в течение 30 мин при 3000 об/мин, жидкость над осадком сливают тонким сифоном или осторожно удаляют пипеткой. Осадок последовательно промывают 15 мл 60%-ного, затем 80%-ного спирта и, наконец, 96%-ным спиртом, а затем эфиром.
Для отделения промывных жидкостей пробирки с содержимым центрифугируют 30 мин. После каждого центрифугирования жидкость над осадком сливают, пользуясь вышеуказанным приемом. При обработке эфиром центрифугирования не требуется, после 10 мин настаивания эфир сливают из пробирки, а его следы удаляют на водяной бане.
Каждую порцию промывной жидкости добавляют не сразу, а в два приема. Сначала вносят небольшую часть жидкости и тщательно распределяют в ней остаток, перемешивая его стеклянной палочкой, а затем добавляют оставшееся количество, тщательно смывая в пробирку приставшие к палочке частицы.
После удаления следов эфира к остатку добавляют 5 мл горячей воды, раствор перемешивают вращательным движением пробирки и нейтрализуют соляной кислотой по лакмусу (сначала двумя каплями концентрированной, а затем 2%-ным раствором).
Из пробирки раствор гликогена переносят в мерную колбу соответствующей емкости (если парное мясо – в колбу на 500 мл, если же мясо, выдержанное в течение 1–2 суток, – на 25– 50 мл). Для проведения цветной реакции в две пробирки молибденового стекла размером 30 x 200 мм помещают аликвотные части раствора гликогена (например, 0,5 и 1,5 мл), добавляют до 5 мл дистиллированной водой и погружают в водяную баню со льдом. Осторожно, непрерывно перемешивая, приливают тонкой струей 10 мл свежеприготовленного раствора антрона в 95%-ной серной кислоте. Затем жидкости еще раз осторожно перемешивают вращательным движением и пробирки помещают на 10 мин в сильно кипящую водяную баню. По окончании нагревания пробирки быстро охлаждают в воде со льдом и измеряют оптическую плотность в отношении контрольного раствора. Образовавшаяся зеленая окраска при использовании реактивов высокой чистоты устойчива на протяжении 4–5 ч.
Контрольный опыт проводят в аналогичных условиях, помещая в пробирку 5 мл дистиллированной воды и 10 мл раствора антрона в серной кислоте.
Оптическая плотность контрольного раствора, измеренная относительно серной кислоты, не должна быть более 0,08.
При помощи калибровочного графика находят концентрацию гликогена во взятом на цветную реакцию количестве раствора и затем пересчитывают на содержание его в мясе.
,
где α – количество гликогена, вычисленного по калибровочному графику, мг;
25 – емкость мерной колбы, в которой был растворен осадок
гликогена;
100 – множитель перевода в проценты;
n – количество исследуемого раствора, взятого на цветную
реакцию, мл;
е – навеска мяса, г.
Чтобы построить калибровочный график, готовят стандартный раствор. Для приготовления стандартного раствора применяют тщательно очищенный и высушенный в эксикаторе гликоген, полученный из печени только что убитого кролика, или пользуются химически чистым препаратом глюкозы; для перевода глюкозы в гликоген результаты определения делят на 1,11.
Взвешивают на аналитических весах 16 мг гликогена, навеску растворяют теплой, дистиллированной водой в мерной колбе на 200 мл, охлаждают до комнатной температуры, доводят объем водой до метки и тщательно перемешивают. Такой раствор содержит в 1 мл 0,08 мг гликогена. Из него готовят серию растворов для построения калибровочного графика, помещая в пробирки количества, указанные в табл.
Количество гликогена, мг |
Количество раствора гликогена, мл |
Количество воды, мл |
Количество раствора антрона, мл |
0,01 |
0,125 |
4,875 |
10,0 |
0,02 |
0,25 |
4,75 |
10,0 |
0,04 |
0,50 |
4,50 |
10,0 |
0,06 |
0,75 |
4,25 |
10,0 |
0,08 |
1,00 |
4,00 |
10,0 |
0,12 |
1,50 |
3,50 |
10,0 |
0,16 |
2,00 |
3,00 |
10,0 |
0,20 |
2,50 |
2,50 |
10,0 |
После добавления антрона пробирку помещают точно на 10 мин в сильно кипящую водяную баню и через определенный промежуток времени (например, 5 мин) заливают раствором антрона следующую пробирку и нагревают ее так же, как и предыдущую.
Если интенсивность окраски раствора не изменяется в течение некоторого промежутка времени, то можно подготовить для измерения сразу несколько растворов. Для этого предварительно устанавливают время, в течение которого измерение возможно. После 10 мин нагревания и охлаждения раствора до комнатной температуры измеряют его оптическую платность, держатель с кюветами вынимают из камеры спектрофотометра и оставляют на 5 или 10 мин, после чего вновь ставят в камеру прибора и измеряют светопоглощение раствора. Такую операцию повторяют несколько раз в течение, например, 1 ч. Если практически получается одна и та же величина оптической плотности, то окраску раствора можно считать стабильной на протяжении исследованного периода времени. Это дает право одновременно подготовить для измерения нужное число пробирок с растворами, что значительно экономит время, затрачиваемое на анализ.
Для построения калибровочного графика необходимо провести не менее трех серий определений, используя каждый раз вновь приготовленный раствор гликогена или глюкозы.