- •Вступ
- •Тема 1. Предмет і методи патофізіології
- •Заняття 1. Значення експериментального методу в патофізіологічних дослідженнях
- •Заняття 2. Рефлекторні реакції організму на дію патогенних подразників
- •Заняття 3. Активність бар’єрних систем організму і їх роль у патології
- •Заняття 4. Хвороботворна дія електричного струму на організм тварин
- •Заняття 5. Вплив зміни атмосферного тиску на організм тварин
- •Заняття 6. Патогенна дія високої і низької температури на організм тварин
- •Заняття 7. Ушкоджувальний вплив хімічних чинників на організм тварин
- •Тема 4. Патофізіологія клітини
- •Тема 5. Реактивність організму і її роль у патології
- •Заняття 9. Залежність реактивності і резистентності організму від стану нервової системи
- •Заняття 11. Алергія
- •Заняття 12. Гіперемія та ішемія
- •Заняття 13. Емболія, кровотеча, тромбоз і стаз
- •Тема 7. Запалення
- •Заняття 15. Біохімічні властивості гнійного ексудату. Явище хемотаксису
- •Тема 8. Патофізіологія теплової регуляції
- •Заняття 16. Обмін речовин при лихоманці
- •Заняття 17. Порушення основного обміну
- •Заняття 18. Набряки і водянки
- •Тема 10. Патофізіологія системи крові
- •Заняття 20. Анемії
- •Заняття 21. Лейкоцитоз і лейкоцитопенія (лейкопенія)
- •Тема 12. Патофізіологія дихання
- •Заняття 23. Патофізіологія зовнішнього дихання
- •Заняття 24. Порушення травлення у шлунку і кишках
- •Тема 14. Патофізіологія печінки
- •Заняття 25. Патогенна дія жовчі на організм при резорбції
- •Тема 15. Патофізіологія нирок
- •Заняття 26. Порушення видільної функції нирок
- •Заняття 27. Роль ендокринних впливів у зміні обміну речовин при стресах
- •Тема 17. Патофізіологія нервової системи
- •Заняття 28. Порушення рефлекторної діяльності нервової системи
Лейкоцитопенія (лейкопенія) — зменшення кількості лейко-
цитів у крові. Як і лейкоцитоз, вона може бути абсолютною чи на- слідком зменшення переважно одного виду лейкоцитів.
У патогенезі лейкоцитопенії відіграють роль два механізми: гальмування процесів лейкопоезу і посилення процесів руйну- вання лейкоцитів над утворенням їх. Частіше спостерігається відносна лейкоцитопенія: нейтропенія, еозинопенія, чи анеози- нофілія, агранулоцитоз тощо.
>Заняття 20. АНЕМІЇ
Мета: вивчити зміни картини крові, а також основні клінічні прояви при експериментальній анемії (постгеморагічній і гемолі- тичній) у кролів.
При підготовці до заняття необхідно засвоїти теоретичний ма- теріал про: поняття нормобластного і мегалобластного типів ери- тропоезу; анемії, їх класифікації, види; клінічний прояв анемії; кількісні і якісні зміни еритроцитів при анеміях; механізм ком- пенсаторних реакцій при гострих і хронічних анеміях.
Студент повинен уміти: робити внутрішньовенні і підшкірні ін’єкції; брати проби крові; брати і готувати проби крові для до- слідження на вміст гемоглобіну, лейкоцитів та еритроцитів; готу- вати, фіксувати й фарбувати мазки; користуватися імерсійною системою мікроскопа для досліджень; заряджати камеру Горяєва пробами для підрахунку еритроцитів і лейкоцитів; диференцію- вати нормальні еритроцити від їх патологічних форм.
a Література
Мазуркевич А.Й., Тарасевич В.Л., Клугі Дж. Патофізіологія тварин: Під-
ручник. ― К.: Вища шк., 2000. — С. 185 – 208.
Патологічна фізіологія: Підручник / За ред. М.Н. Зайка, Ю.В. Биця. — К.:
Вища шк., 1995. — С. 364 – 400.
Патологическая физиология / Под ред. А.Д. Адо и М.А.Адо. — М.: Триада-
Х, 2000. — С. 457 – 502.
Патофизиология: Курс лекций / Под ред. П.Ф. Литвицкого. — М.: Меди-
цина, 1997. — С. 335 – 436.
Лютинский С.И. Патологическая физиология сельскохозяйственных жи-
вотных. — М.: Колос, 2001. — С. 255 – 259.
Мазуркевич А.И. Патологическая физиология сельскохозяйственных жи- вотных. Практикум. — К.: Выща шк., 1991. — С. 110 – 118.
Васильев А.В. Гематология сельскохозяйственных животных. — М.: Мед-
гиз, 1948.
Никитин В.Н. Атлас клеток крови сельскохозяйственных животных и ла- бораторных. — М.: Медгиз, 1956.
114
Руководство к практическим занятиям по патологической физиологии / Под ред. Н.Н. Зайко и Л.Я. Даниловой. — С. 100 – 111.
Посібник для практичних занять з патологічної фізіології / За ред. Ю.В. Би-
ця, Л.Я. Данилової. — К.: Здоров’я, 2001. — С. 201 – 273.
vДослід 1. Простежити зміни кількісного складу еритроцитів і лейкоцитів крові кроля при анемії
Оснащення: піддослідні тварини — три кролі (з постгеморагі- чною анемією, з гемолітичною анемією і контрольний); мікроско- пи з об’єктивами на 20, 40, 90 мм, освітлювачами і камерами Го- ряєва, еритрогемометри, гемометри Салі, меланжери для еритро- цитів і лейкоцитів, струшувач меланжерів, ножиці для вистри- гання, ванночки для фарбування мазків, предметні скельця, притерті покривні скельця, голки для взяття крові, пофарбовані мазки крові тварин, хворих на різні види анемії, вата гігроскопі- чна, ефір, ксилол, фізрозчин, 3 % розчин оцтової кислоти, підфар- бований генціан-віолетом, 0,1 н розчин НСl, імерсійне масло, фі- льтрувальний папір, фарби для крові у співвідношенні 1 мл фар- би Романовського — Гімза на 9 мл дистильованої води, спирт для протирання оптики.
Хід досліду. 1. Попередньо у кролів викликають постгеморагі- чну і гемолітичну анемію. Для відтворення хронічної постгемора- гічної анемії за 21 – 24 дні до початку досліду в кроля роблять кровопускання через день (до 12 разів), випускаючи щоразу по 10 – 12 % об’єму крові з розрахунку, що загальний об’єм крові ста- новить 1/15 – 1/16 маси тіла тварини.
Гостру постгеморагічну анемію викликають одноразовим кро- вопусканням: за 5 – 7 днів випускають 40 – 50 % загальної кіль- кості крові.
Гемолітичну анемію відтворюють триразовим протягом 6 днів підшкірним уведенням 3 % розчину солянокислого фенілгідрази- ну в дозі 0,6 мл на 1 кг маси тіла.
2. Після відповідної обробки операційного поля кров беруть із крайової вушної вени після проколу чи надрізу. Визначають за- гальну кількість еритроцитів і лейкоцитів, вміст гемоглобіну, ко- льоровий показник, виготовляють мазки, фіксують і фарбують їх.
Підрахунок кількості еритроцитів проводять у такий спосіб:
свіжу або стабілізовану кров набирають у еритроцитарний мела- нжер до мітки 0,5, переводять останній у горизонтальне поло- ження, ваткою видаляють надлишок крові і доводять до мітки 101 фізрозчином (розведення у 200 разів). Потім меланжер вміщують на струшувач або струшують вручну протягом 3 хв. У попередньо
115
підготовлену камеру Горяєва під притерте покривне скло вносять з меланжера 3 і 4 краплі і підраховують у 5 великих (80 малень- ких) квадратах на початку під малим, а потім під середнім збі- льшенням мікроскопа кількість еритроцитів. Кількість еритроци- тів в одиниці об’єму крові визначають за формулою
Х = а 4000 в,
б
де Х — кількість клітин в 1 мм3 крові; а — кількість підрахованих клітин у 80 квадратах; в — розведення (у 100 чи 200 разів); б — кількість малих квадратів, у яких роблять підрахунок.
Можна скористатися спрощеною формулою (а • 104), якщо роз- ведення дорівнює 200. При маніпуляціях з меланжером його слід тримати в горизонтальному положенні для запобігання витікан- ню суміші. Кількість суміші, що залишилася, після нанесення на сітку Горяєва треба зберігати у меланжері до кінця дослідження.
Для перерахунку загальної кількості еритроцитів (у Т/л) по- трібно отриманий результат поділити на 106 або помножити на 106 і поділити на 1012.
Підрахунок кількості лейкоцитів здійснюють також у камері Горяєва. Кров для дослідження розбавляють 3 % підфарбованим розчином оцтової кислоти в лейкоцитарному меланжері. В останній набирають свіжу або стабілізовану кров до мітки 0,5. Надлишок крові видаляють ваткою чи фільтрувальним папе- ром. Заповнюють меланжер підфарбованою оцтовою кислотою до мітки 11 (розведення у 20 разів). При цьому настає гемоліз ери- троцитів, а лейкоцити злегка підфарбовуються і їх добре видно під мікроскопом.
Підрахунок лейкоцитів ведуть у 100 великих (1600 малих) квадратах. Загальну кількість лейкоцитів в одиниці об’єму крові обчислюють за формулою, наведеною вище для підрахунку ерит- роцитів.
vДослід 2. Визначення вмісту гемоглобіну і кольорового індексу у крові кроля при анемії
Хід досліду. 1. Визначають вміст гемоглобіну гемометром Салі. Для цього на дно пробірки гемометра до нижньої мітки вносять 0,2 мл 0,1 н НСl. У капіляр до мітки 0,02 мл набирають свіжу або стабілізовану кров і переносять її у пробірку з НСl, попередньо видаливши з капіляра надлишок крові. Кров, що залишилася на стінках капіляра, кілька разів змивають соляною кислотою або
116
дистильованою водою, щораз виливаючи вміст у пробірку. Вміст у пробірці ретельно змішують і відставляють її на 5 – 10 хв для пе- реходу гемоглобіну гемолізованих еритроцитів у солянокислий гематин бурого кольору. Потім у пробірку при постійному помі- шуванні її вмісту додають дистильовану воду для вирівнювання кольору рідини в пробірці з кольором стандарту. За нижнім мені- ском рідини в пробірці знімають показники в одиницях Салі чи у грам-відсотках.
Кількість еритроцитів і концентрацію гемоглобіну можна ви- значати еритрогемометром чи фотоелектрокалориметром, а кіль- кість еритроцитів і лейкоцитів — також з використанням кондук- тометричних лічильників у приладах ФЕК-62, ІКМ-2, «Пікоскел», «Целлоскоп» та ін.
2.Обчислюють кольоровий індекс відношенням добутку кіль- кості еритроцитів у нормі на відсоток визначеного в крові гемо- глобіну до добутку відсотка вмісту гемоглобіну в нормі на кіль- кість визначених у крові еритроцитів. У нормі цей індекс дорів- нює 1, його зменшення свідчить про гіпохромію, збільшення — про гіперхромію.
3.Аналіз отриманих результатів і висновки заносять до прото- колу заняття. Звертають увагу на зміну кількісних показників.
vДослід 3. Вивчення якісних змін еритроцитів у пофарбованих мазках при анемії
Хід досліду. 1. У приготовлених і пофарбованих мазках крові визначають характер якісних змін еритроцитів. Для контролю використовують мазки нормальної крові одних і тих самих тва- рин, атлас крові.
Для приготування і фарбування мазка краплю крові вміщують на чисте сухе знежирене предметне скло ближче до одного з його вузьких країв. В одну руку беруть скельце з краплею крові, утри- муючи його в горизонтальному положенні за короткі ребра, в ін- шу — шліфоване предметне чи покривне скельце за довгі ребра. Друге скельце ставлять на перше поряд із краплею крові спочат- ку перпендикулярно, а потім під кутом 45°, щоб крапля крові бу- ла зовні і всередині гострого кута й розтікалася уздовж короткого ребра. Швидким рівним рухом протягують скельце з краплею крові вздовж усього предметного скельця. Мазок має бути рівним, спочатку потовщеним, наприкінці — тонким і закінчуватися «бо- родою». Через кілька секунд, коли мазок висохне, його фіксують протягом 5 – 10 хв у метиловому спирті (в абсолютному етиловому чи спирті-денатураті — протягом 30 – 35 хв).
117
2.Для прискорення фарбування мазка після висихання спир- ту на мазок наносять 2 – 3 краплі чистої фарби Романовського — Гімза і паличкою розносять по всьому мазку. Через 3 – 5 хв дода- ють стільки ж крапель дистильованої води і рівномірно розмішу- ють. Потім фарбу змивають водою. Загальна тривалість фарбу- вання — 6 хв.
3.На пофарбованих мазках вивчають якісні зміни еритроцитів.
4.Роблять висновки про характер якісних і кількісних змін еритроцитів і стан захисно-пристосовних механізмів організму при кожному виді анемії. Змінені форми еритроцитів замальову- ють у протоколі заняття.
b НАВЧАЛЬНОРОБОТА -ДОСЛІДНИЦЬКА
vДослід 1. Вивчення зміни в організмі кролів при гострій і хронічній анемії
Мета: 1. Відтворити у кролів експериментально: гостру постге- морагічну анемію; хронічну постгеморагічну анемію; гемолітичну анемію.
2. Провести клінічні спостереження за станом тварини протя- гом установленого викладачем періоду з реєстрацією отриманих результатів у протоколі заняття за такою схемою:
|
|
|
Показник |
|
|
Період дослідження |
Температура |
Пульс, |
Дихання за |
Колір види- |
|
|
|
тіла, °С |
уд/хв |
хвилину |
мих слизових |
|
|
|
|
|
оболонок |
Вихідний |
|
|
|
|
|
День досліду: |
|
|
|
|
|
1-й |
|
|
|
|
|
2-й |
|
|
|
|
|
і т.д. |
|
|
|
|
|
3. Встановити динаміку і стан захисно-пристосовних реакцій організму при кожному виді анемії.
AТеми рефератів
1.Патогенез залізодефіцитних анемій у тварин.
2.Стан еритропоетичної тканини у тварин при анемії і методи активізації її функції.
118