- •Раздел 2.
- •Раздел 3. Микробиология внутрибольничных инфекций
- •Раздел 1
- •1.1.Нормальная микрофлора Строение, функции, происхождение
- •2.Функции нормальной микрофлоры
- •Формирование нормальной микрофлоры
- •1.2. Дисбактериоз
- •1 Степень – не резко выражены показатели.
- •2 Степень – более 2 показателей 1-2 резко выражено.
- •3 Степень – резко выраженных более 2-х показателей.
- •2 Группа. Дети раннего возраста
- •3 Группа. У детей дошкольного и школьного возраста.
- •1.Дисбактериоз кишечника может проявляться в виде диареи, неспецифического колита, синдрома малой сорбции, дуоденита, язвенной болезни желудка, гастрита, гастроэнтерита.
- •Раздел 2
- •2.1. Микробиология инфекционных поражений крови
- •Забор, хранение и транспортировка крови для бактериологического исследования:
- •Микробиологическая диагностика каик
- •Оценка роста микроорганизмов по методу d.Макi
- •2.2.Микробиология инфекционных поражений сердечно-сосудистой системы
- •Бактериологическое исследование перикардиальной жидкости
- •1 День исследования:
- •2.3. Микробиология хирургических инфекций
- •Системные инфекции
- •Микробиология инфекционных поражений рыхлой соединительной ткани
- •Микробиология инфекционных поражений лимфатических сосудов
- •2.4. Микробиология инфекционных поражений опорно-двигательного аппарата
- •Возбудители инфекционных поражений опорно-двигательного аппарата:
- •Бактериологическое исследование синовиальной жидкости
- •1 День исследования:
- •2.4. Микробиология инфекций верхних дыхательных путей
- •Микробиология инфекционных поражений носа
- •Микозы носа и околоносовых пазух Микоз носа
- •Инфекционные поражения носа и околоносовых пазух паразитарной этиологии Демодикоз носа
- •Криптоспоридиоз носа
- •Фарингит
- •Инвазии глотки Гангилонематоз глотки
- •2.5. Микробиология инфекций нижних дыхательных путей
- •Нижних дыхательных путей (гортань, трахея, бронхи)
- •Трахеит
- •Инфекционные поражения нижних дыхательных путей вирусной этиологии
- •Респираторно-синтициальная вирусная инфекция
- •Инфекционные поражения нижних дыхательных путей грибковой этиологии
- •Анкилостомидозный трахеит
- •Пневмония
- •Диагностика атипичных пневмоний
- •2.6. Микробиология инфекций мочеполовых путей
- •1.1.Микробиология инфекционных поражений мочевыводящих путей
- •1.1.1. Микробиология бактериальных поражений мвп Микробиология бактериальных поражений верхних отделов мвп
- •Микробиология бактериальных поражений нижних отделов мвп Цистит
- •2.7. Микробиология инфекций полости рта
- •2.8. Микробиология инфекций желудочно-кишечного тракта
- •4. Bacciillaceae.
- •5. Clostridiaceae
- •6. Staphylococceae
- •2.9. Микробиология инфекций цнс
- •5. По путям инфицирования:
- •2.10. Микробиология инфекций кожи
- •2.11. Микробиология инфекций глаз
- •2.12. Микробиология инфекционных поражений уха
- •1.1.Микробиология инфекционных поражений наружного уха
- •2.13.Микробиология анаэробной инфекции
- •Микробиологическое исследование
- •Раздел 4
- •4.1. Ситуационные задачи
- •Редактор Алехнович л.А. Подписано к печати Формат Печать офсетная
- •Саратовский государственный медицинский университет
- •410012, Саратов, ул. Б. Казачья, 112
Забор, хранение и транспортировка крови для бактериологического исследования:
Забор крови проводят из локтевой вены.
Обработка места венепункции:
- поверхность протирают тампоном, смоченным в 5% йодном растворе, круговыми движениями от центра к периферии;
- обработанный участок высушивают и затем кожу тщательно очищают 70% этанолом.
Обработанный участок вновь высушивают и затем:
1. Прокалывают вену стерильной иглой со шприцем на участке забора и забирают 10 мл крови на гемокультуру. Над пламенем спиртовки открывают флакон со средой и вносят из шприца кровь осторожно (чтобы не замочить пробку), перемешивают содержимое флакона.
2. Для серологической диагностики кровь берут в объеме 2-5 мл в стерильную пробирку.
Примечание:
- забранную кровь вносят в емкости с аэробными или анаэробными условиями;
- если у больного отмечается лихорадка неясного генеза, то кровь берут поэтапно:
- первый этап – берут 2 пробы из разных кровеносных сосудов;
-второй этап – через 24 или 36 часов берут еще две пробы на пике температуры;
- взятие крови из постоянного внутривенного или внутриартериального катетера допускается только в случаях подозрения на катетер-ассоциированную инфекцию. Если больной уже лечится антибиотиками, то у него в течение 48 часов забирают 6 проб.
Хранение – не более 2 часов при комнатной температуре.
Транспортировка. Используются стерильные транспортировочные емкости со средой, содержащей нейтрализаторы антибиотиков.
Забор, хранение и транспортировка крови для вирусологического исследования:
Забор крови:
- забор крови проводят так же как для бактериологического исследования;
-при исследовании плазмы на вирусы используют пробирки с антикоагулянтом – этилендиаминтетраацетатом (ЭДТА) или гепарином. Отделенную плазму (после центрифугирования) берут в асептических условиях и исследуют.
Хранение – не более 2 часов при комнатной температуре.
При постановке ПЦР для выявления НК вирусов плазму следует охладить или заморозить при – 700С для более длительного хранения.
Транспортировка. Используют стерильные транспортировочные емкости со средой, содержащей реагенты, разрушающие форменные элементы крови. Материал транспортируют в одноразовых сухих пробирках с вмонтированным зонд-тампоном (тубсер).
Забор, хранение и транспортировка крови для микологического исследования:
- забор проводят так же как для бактериологического исследования;
-хранить до начала исследования не более 2 часов при комнатной температуре;
- транспортировать так же как и при бактериологическом исследовании.
Забор, хранение и транспортировка крови для паразитологического исследования:
- забор, хранение и транспортировку проводят так же как и при бактериологическом исследовании;
- для диагностики паразитарных инвазий используют нативную кровь или кровь с добавлением антикоагулянтов.
Бактериологическое исследование крови
Посев крови проводят в 50-100 мл. сахарного бульона, а также параллельно в тиогликолевую среду, при подозрении на брюшной тиф - в желчный бульон или среду Раппопорт. Обязательно выдерживают соотношение крови и среды 1:10 .
Посевы помещают в термостат и инкубируют в течение 10 дней. Просмотр посевов проводят ежедневно. О наличии микробов свидетельствует: помутнение среды; осадок эритроцитов и хлопьевидный осадок на их поверхности ,пленка на поверхности; гемолиз эритроцитов;
При наличии роста делают высевы на чашки с 5% кровяным агаром. Изучают колонии, делают посев на скошенный агар для накопления и идентификации культуры, определяют чувствительность к антибиотикам.
Интерпретация результатов
- анализ можно считать отрицательным, если по прошествии 10 дней после посева крови, роста микроорганизмов на питательных средах не обнаружено;
- выделение патогенных видов свидетельствует об их этиологической роли в заболевании;
- при выделении условно-патогенных микроорганизмов следует учитывать идентичность гемокультуры с культурами, выделенными из другого материала от этого больного.
Для определения истинной этиологической ролимикроорганизмов необходимо учитывать следующие факторы:
- обнаружение одного и того же микроорганизма в посевах двух и более проб крови;
- быстрый рост микроорганизмов (24ч.- 48 ч);
- проявление одинаковых биологических свойств и чувствительности к антибиотикам у разных изолятов, полученных из пробы крови;
Катетер - ассоциированные инфекции крови (КАИК)
В настоящее время отмечается рост числа катетер – ассоциированных инфекций, которые занимают третье место среди всех нозокомиальных инфекций и первое место среди причин бактериемии.
КАИК - первичная бактериемия у пациентов с сосудистым катетером и системными клиническими проявлениями инфекции, отсутствием других явных источников инфекции и выделением с поверхности катетера количественным (103 КОЕ/ мл с сегмента катетера) или полуколичественным методом ( 15 КОЕ/ мл с кончика катетера или подкожного сегмента) того же микроорганизма, что из крови. Или при получении пятикратной разницы количества микробных клеток в гемокультурах, взятых одновременно из центрального венозного кровотока (ЦВК) и периферической крови. Чаще всего при КАИК выделяются коагулазо–негативные стафилококки и S. aureus. Значительно реже выделяются Enterococcus spp ,Candida spp , Pseudomonas spp. еще реже представители семейства энтеробактерий.
У пациентов с непродолжительно стоящим катетером его колонизация чаще всего происходит S. aureus, Bacillus spp, Corynebacterium spp. Поверхность катетера может колонизироваться также с кожи рук медперсонала P. aeruginosa, Acinetobacter spp, Stenotrophomonas. maltophilia, C. albicans.
Колонизация катетеров возможна также при использовании контаминированных инфузионных растворов. В этом случае наиболее часто выделяются Enterobacter spp , Citrobacter spp , Serratia spp.
Разработана классификация и критерии диагностики КАИК (Seifert H , Jancen B. 2004г.)
1. Колонизированный катетер: в этом случае не наблюдается клинической симптоматики .Отмечается рост бактерий > 15 КОЕ/ мл –или -рост 103 КОЕ/ м – при использовании количественного метода оценки колонизации катетера.
2.Инфекция места введения катетера: гиперемия, болезненность. Нагноение кожи в пределах 2см. от места введения катетера. Культуральный метод исследования крови дает отрицательный результат. При этих формах катетер колонизирован, а бактериемии нет или есть.
3. «Карманная» инфекция: нагноение подкожного кармана в месте имплатированного катетера. Культуральный метод исследования крови дает отрицательный результат.
4. Туннельная инфекция: гиперемия, уплотнение и нагноение в пределах более 2см. от места введения катетера и по направлению вдоль туннелированного катетера. Культуральное исследование крови дает отрицательный результат.
5. Инфекция, связанная с инфузатом: выделение одного и того же микроорганизма из переливаемого раствора и крови из периферической вены при наличии системных признаков инфекции.