- •Список сокращений
- •Глава I
- •1.1. Общие сведения о внутрибольничных инфекциях
- •1.2. Причины вби
- •Классификация вби (а. П. Красильников, а. И. Кондрусев, 1987)
- •1.3. Источники внутрибольничных инфекций
- •1.4. Возбудители вби
- •Возбудители бактериальных вби
- •Вирусы-возбудители вби
- •1.5. Механизмы и пути передачи вби
- •1.6. Группы риска
- •1.7. Факторы, предрасполагающие к возникновению вби
- •Глава II Инфекционный контроль и профилактика вби
- •2.1. Асептика
- •Зона особого режима
- •2.2. Антисептика
- •Гигиеническая обработка рук
- •Обычная (социальная) обработка рук (1 уровень)
- •Гигиеническая обработка рук (2 уровень)
- •2.3. Дезинфекция
- •3 Степени категории риска переноса вби
- •Методы дезинфекции
- •2.4. Современные дезинфицирующие вещества
- •2.5. Методика проведения дезинфекции
- •2.6. Меры предосторожности при работе с дезинфекционными средствами и первая помощь при отравлении ими
- •2.7. Приготовление и использование традиционных хлорсодержащих дезинфицирующих растворов Приготовление 10% раствора хлорной извести и рабочих растворов (0,5%, 1%, 3%)
- •Приготовление рабочих растворов хлорной извести из маточного 10% раствора хлорной извести
- •Применение растворов хлорной извести:
- •Приготовление рабочих растворов хлорамина (0,5%, 1%, 3%, 5%)
- •Приготовление рабочих растворов хлорамина
- •Применение растворов хлорамина:
- •Приготовление рабочего раствора гипохлорита кальция
- •Приготовление рабочего раствора гипохлорита кальция
- •Применение растворов гипохлорита кальция
- •Приготовление рабочих растворов соды
- •5. Генеральная уборка.
- •2.9. Дезинфекция изделий медицинского назначения
- •2.10. Предстерилизационная очистка (по)
- •Комплекс с «Биолотом»
- •Методика постановки проб
- •2.11. Стерилизация. Методы, средства и режимы стерилизации
- •1. Термический метод
- •Режим стерилизации отдельных объектов.
- •Укладка стерилизационных коробок и правила работы с ними
- •2. Химический метод стерилизации
- •Стерилизация растворами химических средств
- •2.12. Цели, задачи и принципы работы цсо
- •Устройство цсо
- •2.13. Инструкция по дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации изделий медицинского назначения
- •2.14. Санитарно-противоэпидемический режим (спэр) помещений лпу соматического профиля
- •Спэр поста медицинской сестры.
- •Спэр палаты.
- •Санитарно- противоэпидемический режим (спэр) буфета.
- •Спэр ванной комнаты.
- •Спэр клизменной комнаты.
- •Предстерилизационная очистка наконечников:
- •Стерилизация наконечников
- •Спэр санитарной комнаты.
- •Дезинфекционные мероприятия после выписки пациента из стационара.
- •Обработка перчаток
- •II. Предстерилизационная очистка:
- •Стерилизация:
- •2.15. Бельевой режим
- •2.16. Бактерицидные облучатели
- •2.17. Основные мероприятия по профилактике профессиональных заражений
- •Перечень медикаментов, входящих в аварийную аптечку для оказания первой медицинской помощи
- •Глава III противоэпидемические мероприятия при некоторых бактериальных и вирусных вби
- •3.1. Острые кишечные инфекции (оки)
- •Этиологическая структура основных внутрибольничных кишечных инфекций
- •Мероприятия по предотвращению заносов и дальнейшего распространения оки в лпу:
- •Мероприятия в случае заноса оки на другие отделения:
- •3.2. Туберкулез
- •Восприимчивый организм или коллектив с угнетенным иммунным статусом.
- •I. Воздействие на источник инфекции
- •II. Воздействие на пути и факторы передачи возбудителей туберкулеза
- •Обработка карманных плевательниц и мокроты
- •III. Воздействие на восприимчивый организм или коллектив
- •3.3. Вирусные гепатиты
- •Противоэпидемические мероприятия при работе отделения вирусных гепатитов.
- •Мероприятия по предупреждению заноса вг в отделения лпу
- •Методы и средства дезинфекции объектов при вирусных гепатитах
- •3.5. Профилактика инфекций с гемоконтактным механизмом заражения (вич-инфекции и вирусных гепатитов в и с) у медицинских работников
- •Профилактика вич-инфекции при риске парентерального инфицирования
- •Журнал учета аварийных ситуаций, травм медицинского персонала
- •3.6. Инфекционные болезни, на которые распространяются международные медико-санитарные правила
- •Мероприятия при выявлении больного, подозрительного на заболевание, подпадающее под действие Правил
- •Применение защитного костюма:
- •3.7. Дезинфекционные мероприятия при чуме
- •3.8. Дезинфекционные мероприятия при холере
- •Режимы дезинфекции при холере
- •3.9. Дезинфекционные мероприятия при желтой лихорадке и других геморрагических лихорадках
- •(Методические указания)
- •2.4. Категорически запрещается:
- •Перечень разрешенных для передачи продуктов, правила хранения и сроки реализации особо скоропортящихся продуктов
- •Список литературы:
- •Глава I. Общие сведения о внутрибольничных инфекциях
- •Глава II. Инфекционный контроль и профилактика внутрибольничных инфекций
- •Глава III. Противоэпидемические мероприятия при некоторых бактериальных и вирусных вби
- •107564, Москва, ул. Лосиноостровская, 2.
-
Комплекс с «Биолотом»
а) при машинной мойке 0,3 %
б) при ручной мойке 0,5 %
Приготовление – воду подогреть до 40-450С, затем добавить 5 г (3 г) порошка «Биолот» и воду до 1 л. (995 мл.)
Инструмент загружается в горячий раствор на 15 мин.
Каждое изделие промывается в этом же растворе.
NB!!! Комплекс одноразовый.
-
3 % раствор соды (30 г питьевой соды + 970 мл воды).
-
подогревается до 40-450С;
-
партия инструментов загружается на 15 мин;
-
каждый инструмент промывается в этом же растворе.
NB!!! Рассчитан на одну загрузку.
-
2 % раствор соды (20г питьевой соды + вода до 1 л).
-
ИМН загружают в приготовленный раствор и кипятят в нем в течение 15 минут;
-
после остывания раствора ИМН промывают в этом же растворе;
-
комплекс объединяет 1 и 2 этапы обработки ИМН (дезинфекцию и ПО).
-
Нейтральный анолит – по инструкции.
После ополаскивания в дистиллированной воде проводится контроль качества предстерилизационной обработки инструментария.
Контроль качества ПО:
1) Проводят центры ГСЭН 1 раз в квартал.
2) Самоконтроль в ЛПУ проводится не реже одного раза в неделю, организуется и контролируется старшей сестрой отделения, в ЦСО ежедневно.
З) Контролю подвергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но
не менее 3 – 5 единиц.
4) При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий, из которой отбирался контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.
Методика постановки проб
Контролируемые изделия протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом или 2-3 капли реактива с помощью пипетки наносят на изделие.
В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив в шприце оставляют на 0,5-1,0 минуту, после чего вытесняют на марлевую салфетку.
При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц и, последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3-4 капли.
При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий, реактив вводят внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5-1,0 минуты, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.
Фенолфталеиновая проба проводится с целью проверки наличия моющих средств на ИМН.
Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Спиртовой раствор фенолфталеина хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение одного месяца.
Пробу с Суданом – III используют для определения жировых загрязнений на шприцах и других изделиях. Рабочий раствор для постановки пробы может храниться 6 месяцев в холодильнике в плотно закрытом флаконе.
Азопирамовая проба кроме следов крови выявляет наличие на изделиях окислителей (хлорамин, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот.
Методика постановки азопирамовой пробы и учет результатов.
На 1 литр раствора отвешивают 100 г. амидопирина и 1,0-1,5 г. солянокислого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95 % этиловым спиртом до объема 1,0 литр. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.
Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе с маркировкой (дата приготовления, название) в темноте при +40С (в холодильнике) 2 месяца; в темноте при комнатной температуре +18-+230С – не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.
Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы количества азопирама и З % перекиси водорода.
Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +250С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т. д.)
Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости: 2-3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, реактивом пользоваться нельзя.
При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и хлорсодержащих окислителей наблюдается буроватое окрашивание реактива; в остальных случаях окрашивание розово- сиреневое.
При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактивов, наступившее позже, чем через 1 минуту после постановки проб, не учитывается.
При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю группу контролируемых изделий, от которой отбирался контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.