Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Саидов М.С. и соавт. Практикум по мед. микробиологии и вирусологии.docx
Скачиваний:
624
Добавлен:
15.06.2016
Размер:
1.51 Mб
Скачать

Препараты для специфической профилактики и терапии менингококковых и гонококковых инфекций

Препарат

Состав

Показания к применению

1.

Вакцина менингококковая группы А полисахаридная сухая

(Россия)

Химическая вакцина из капсульного

полисахарида А; А+С

Для специфической профилактики менингококковой инфекции детей

до 1 года и старше

2.

Вакцина менингококковая полисахаридная серогрупп А+С

(Франция)

Для специфической

профилактики детей от 18 мес. и старше, а также взрослых.

3.

Гонококковая вакцина (жидкая)

Взвесь инактивированной культуры гонококков

Для лечения вялотекущих и хронических форм

гонореи в составе

комплексной терапии.

Вопросы для самоконтроля:

  1. Каковы морфологические, тинкториальные и культуральные свойства менингококков и гонококков? В чем отличие их биохимических свойств?

  2. Какие заболевания могут вызвать менингококки?

  3. Какие микроорганизмы (кроме менингококков) могут вызвать воспаление спинномозговых оболочек?

  4. Какова резистентность менингококков и гонококков к факторам внешней среды?

  5. Назовите методы микробиологической диагностики острой и хронической гонореи.

  6. Что такое бленнорея? Могут ли болеть бленнореей взрослые?

  7. Какие серологические реакции применяются при диагностике менингококковой и гонококковой инфекций?

  8. Какой метод исследования применяется при подозрении на менингококковое носительство.

  9. В чем заключается профилактика менингококковой инфекции.

Занятие 11

ТЕМА: МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА АНАЭРОБНЫХ ИНФЕКЦИЙ. БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ГНОЯ (ЗАКЛЮЧЕНИЕ).

Цель: изучить методы микробиологической диагностики анаэробных инфекций. Ознакомиться с методами специфической терапии и профилактики анаэробных инфекций.

Объединение микроорганизмов в группу анаэробов имеет лишь одну основу - анаэробный тип дыхания.

Возбудители анаэробной инфекции делятся на две большие группы: образующие споры (клостридии) и необразующие споры (неклостридиальные анаэробы).

Возбудители клостридиальной раневой инфекции являются: возбудители столбняка- Cl. tetani, ботулизма- Cl. botulini и группа возбудителей газовой анаэробной инфекции- Cl. perfringens, Cl. novyi, Cl. septicum, Cl. histolyticum, Cl. sordelli.

К неклостридиальным, не образующим спор, анаэробам относятся:

- Грамотрицательные палочки (бактероиды, фузобактерии).

-Грамположительные палочки (пропионобактерии, бифидо и лактобактерии).

- Грамотрицательные кокки (вейлонеллы).

- Грамположительные кокки (пептококки, пептострептококки).

Эти бактерии, в основном, являются нормальными обитателями организма человека и при определенных условиях могут вызывать гнойно - воспалительные заболевания.

Возбудители газовой гангрены

Газовая гангрена – полимикробная раневая инфекция, возбудителями которой являются клостридии – Cl. perfringens, Cl. novyi, Cl. septicum, Cl. histolyticum, Cl. sordelli. Чаще других возбудителем газовой гангрены является – Cl. perfringens.

Представляют собой крупные, грамположительные палочки образующие споры. Все они подвижны, за исключением Cl. perfringens. Этот возбудитель отличается и тем, что в организме человека образует капсулу.

Возбудители газовой гангрены обладают выраженной сахаро- и протеолитической активностью, в результате чего в ране образуются газообразные продукты. Отсюда происходит и название болезни.

Основным фактором патогенности является экзотоксин. Образует также гиалуронидазу и другие ферменты патогенности.

По антигенной специфичности выделяют 6 серологических вариантов. Газовая гангрена развивается при обширных ранениях больших массивов мышц, при огнестрельных ранениях, обширных ожогах и т. д.

Газовая гангрена протекает без ярко выраженного воспаления и характеризуется прогрессирующим некрозом тканей, отеком, газообразованием в тканях и общей интоксикацией. Иммунитет носит антитоксический характер.

Материалом для исследования является раневое отделяемое. При микроскопическом исследовании можно обнаружить крупные палочки, образующие капсулу.

Но основным методом диагностики является бактериологическое исследование. Для обнаружения вида возбудителя (токсина) ставят биологическую пробу на морских свинках.

Для терапии применяют поливалентную противогангренозную сыворотку, а после определения типа токсина для лечения применяют видоспецифическую сыворотку.

Возбудитель столбняка относится к роду Clostridium, виду Cl. tetani. Представляют собой крупные грамположительные палочки, образуют споры, расположенные терминально. Перитрихи.

Основным фактором патогенности является экзотоксин, который состоит из двух фракций: тетаноспазмина, тетанолизина. Ведущую роль в патогенезе заболевания играет тетаноспазмин.

Возбудитель столбняка находится в почве, особенно, в унавоженной в виде спор, где они могут сохраняться десятилетиями. Возбудитель столбняка распространен повсеместно, но наибольшая распространенность в южных регионах с теплым влажным климатом и плодородными почвами.

Заражение происходит через дефекты кожи и слизистых, при ранениях, ссадинах, ожогах, отморожениях.

Столбняк – тяжелое заболевание, которое характеризуется клоническими и тоническими судорогами. У человека судороги начинаются с жевательных (тризм) и мимических мышц лица и охватывают всю скелетную мускулатуру. В этом случае больной в судорогах выгибается в виде моста, касаясь затылком и пятками (опистотонус).

Микробиологическая диагностика столбняка проводится редко, так как при характерной клинической картине в этом нет необходимости.

Бактериологическое исследование проводят при необходимости выделить возбудителя из перевязочного материала, кетгута.

Для обнаружения столбнячного токсина ставят биологическую пробу на белых мышах. С этой целью материал растирают в стерильной ступке с песком, заливают изотоническим раствором хлорида натрия для экстрагирования токсина, фильтруют через бумажный фильтр. Часть фильтрата вводят внутримышечно белым мышам (опыт), контрольным мышам вводят другую часть фильтрата в смеси с антитоксической сывороткой. При наличии токсина в материале через 1-2 суток у опытных мышей появляется ригидность хвостовых мышц и мышц задних конечностей «хвост трубой». Затем опытные животные погибают.

Для обнаружения токсина в крови ставится также РПГА с антительным эритроцитарным диагностикумом.

Ботулизм – пищевое отравление, которое рассматривается не как инфекционное заболевание, а как интоксикация содержащимся в пищевом продукте готовым ядом анаэробных бацилл. C. botulinum (от лат. botulis- колбаса). Широкое распространение C. botulinum в природе, и чрезвычайная стойкость его спор обуславливают возможность их попадания в различные пищевые продукты. Благоприятные условия для прорастания спор и накопления токсины создаются в глубоких слоях пищевого продукта и в особенности в герметически закупоренных консервах. В связи с этим ботулизм наблюдается чаще всего при употреблении консервов, подвергших недостаточной обработке.

В клинической картине заболевания преобладают тяжелые нервные явления связанные с поражением ядер черепно- мозговых нервов, а не диспептические явления, как при других пищевых отравлениях. Заболевание ботулизмом чаще заканчивается смертью.

Лабораторному исследованию подвергаются:

  1. Остатки пищи, послужившие причиной отравления;

  2. Материал от больного: рвотные массы и содержимое желудка (полученное при его промывании), кровь, моча, испражнения;

  3. Секционный материал, содержимое желудка, отрезки тонких и толстых кишок, брыжеечные железы, головной и спиной мозг.

Анализ ведется в двух направлениях: получение культуры микроба и обнаружения токсина. Выделение культуры производится по общей методике выделения культур анаэробов.

Для обнаружения ботулотоксина в сыворотке крови больного ставят РПГА с эритроцитами, нагруженными моновалентными антитоксическими противоботулиническими сыворотками типов А, В, Е. В качестве контроля берут нормальную сыворотку крови. Обнаружение ботулотоксина в пищевых продуктах и определение токсигенности C. botulinum проводят в реакции нейтрализации токсина на белых мышах. Для определения серотипа токсина реакцию ставят с моновалентными сыворотками А, В, Е. При нейтрализации токсина гомологичной антитоксической сывороткой мыши остаются живыми.